Погляд на проблему
T25 2 2023

В-КЛІТИННІ НОВОУТВОРЕННЯ ЛІМФОЇДНОЇ ТКАНИНИ У П’ЯТОМУ ПЕРЕГЛЯДІ КЛАСИФІКАЦІЇ ВООЗ ГЕМАТОЛІМФОЇДНИХ ПУХЛИН (2022 р.)

1. Загальні принципи класифікації. Новоутворення з В-клітин-попередників

Ключові слова:
, , , ,
Повний текст статті у форматі PDF
Переглядів: 119

О.О. Фільченков1, М.П. Завелевич1, І.В. Абраменко2

1 Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіологіїім. Р.Є.Кавецького НАН України
2 Національний науковий центр радіаційної медицини НАМН України, Київ, Україна

DOI:  https://doi.org/10.15407/oncology.2023.02.089

 

Новоутворення лімфоїдної та кровотворної тканин є однією з поширених груп злоякісних пухлин. Різні типи пухлин, що виникають з клітин лімфоїдної тканини, становлять досить гетерогенну групу. Тому розробка загальновизнаної системи класифікації злоякісних новоутворень цієї групи стала нагальною необхідністю, а її впровадження в клінічну практику принесло величезну користь. Нове й більш глибоке розуміння патогенезу новоутворень лімфоїдної тканини вимагає постійного перегляду їх класифікації. У 2022 р. фахівцями Всесвітньої організації охорони здоров’я було підготовлене чергове 5-е видання класифікації гематолімфоїдних пухлин, яке стало переглядом попереднього видання 2017 р. В огляді, який складається із двох частин, викладено основні положення оновленої класифікації щодо В-клітинних новоутворень лімфоїдної тканини. Головну увагу зосереджено на основних змінах у порівнянні з попереднім виданням класифікації. У першій частині огляду розглянуто такі основні категорії як пухлиноподібні ураження з переважанням B-клітин та пухлини з В-клітин попередників. Обговорюються лабораторні критерії, які є важливими для встановлення остаточного діагнозу при окремих нозологічних формах цих пухлин. Пухлини зі зрілих В-клітин, плазмоклітинні пухлини та інші захворювання, при яких спостерігається парапротеінемія, будуть розглянуті у наступному випуску.

 

Посилання

  1. Rappaport Tumors of the Hematopoietic System. Atlas of Tumor Pathology, Section 3. Washington, DC: Armed Forces Institute of Pathology, 1966.
  2. Dorfman RF. Classification of non-Hodgkin’s Lancet 1974; 303 (7869): 1295–6. doi: 10.1016/s0140-6736(74)90061-0.
  3. Bennett M, Farrer-Brown G, Henry K, et al. Classifi ation of non-Hodgkin’s Lancet 1974; 304 (7877): 405–8. doi: 10.1016/S0140-6736(74)91786-3.
  4. Kay Classification of non-Hodgkin’s lymphomas. Lancet 1974; 304 (7880): 586. doi: 10.1016/s0140-6736(74)91901-1.
  5. Braylan RC, Jaff ES, Berard CW. Malignant lymphomas: current classifi ation and new Pathol Annu 1975; 10: 213–70. PMID: 1101171.
  6. Lennert K, Stein H, Kaiserling Cytological and functional criteria for the classification of malignant lymphomata. Br J Cancer 1975; 2 (Suppl): 29–43. PMID: 52366.
  7. Lukes RJ, Collins New approaches to the classification of the lymphomata. Br J Cancer 1975; 2 (Suppl): 1–28. PMID: 1101914.
  8. Mathé G, Rappaport H, O’Conor GT, et al. Histological and cytological typing of neoplastic diseases of haematopoietic and lymphoid International Histological Classification of Tumors, No 14. Geneva: World Health Organization, 1976. ISBN: 9241760141.
  9. Higby A practical classification of lymphomas. N Engl J Med 1979; 300 (22): 1283. doi: 10.1056/NEJM197905313 002234.
  10. Suchi T, Tajima K, Nanba K, et al. Some problems on the histopathological diagnosis of non-Hodgkin’s malignant lymphoma — a proposal of a new Acta Pathol Jpn 1979; 29 (5): 755–76. doi: 10.1111/j.1440-1827.1979.tb00942.x.
  11. Lennert K, Collins RD, Lukes Concordance of the Kiel and Lukes-Collins classifi ations of non-Hodgkin’s lymphomas. Histopathology 1983; 7 (4): 549–59. doi: 10.1111/ j.1365-2559.1983.tb02267.x
  12. National Cancer Institute sponsored study of classifications of non-Hodgkin’s lymphomas: summary and description of a working formulation for clinical us The NonHodgkin’s Lymphoma Pathologic Classification Project. Cancer 1982; 49 (10): 2112–35. doi: 10.1002/1097-0142(19820515)49:10<2112::aid-cncr2820491024>3.0.co;2-2.
  13. Lennert K, Feller A Histopathology of Non-Hodgkin’s Lymphomas (Based on the Updated Kiel Classification), ed 2. Berlin, Heidelberg: Springer-Verlag, 1992. ISBN: 978-3642971891.
  14. Harris NL, Jaff ES, Stein H, et al. A revised EuropeanAmerican classification of lymphoid neoplasms: a proposal from the International Lymphoma Study Group. Blood 1994; 84 (5): 1361–92. PMID:
  15. World Health Organization Classifi ation of T Pathology and Genetics: Tumours of the Haematopoietic and Lymphoid Tissues. Jaff ES, Harris NL, Stein H, Vardiman JW (eds). Lyon: IARC, 2001. ISBN-13: 978-9283224112.
  16. World Health Organization Classifi ation of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid T 4th ed, vol 2. Swerdlow SH, Campo E, Harris NL, et al. (eds). Lyon: IARC, 2008. ISBN-13: 978-9283224310.
  17. World Health Organization Classification of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid T Revised 4th ed, vol 2. Swerdlow SH, Campo E, Harris NL, et al. (eds). Lyon: IARC, 2017. ISBN-13: 978-9283244943.
  18. Alaggio R, Amador C, Anagnostopoulos I, et al. The 5th edition of the World Health Organization Classification of Haematolymphoid Tumours: Lymphoid Ne Leukemia. 2022; 36 (7): 1720–48. doi: 10.1038/s41375-02201620-2.
  19. Campo E, Jaffe ES, Cook JR, et al. The International Consensus Classifi ation of Mature Lymphoid Neoplasms: a report from the Clinical Advisory Blood 2022; 140 (11): 1229–53. doi: 10.1182/blood.2022015851.
  20. Arber DA, Orazi A, Hasserjian RP, et al. International Consensus Classification of Myeloid Neoplasms and Acute Leukemias: integrating morphologic, clinical, and genomic Blood 2022; 140 (11): 1200–28. doi: 10.1182/ blood.2022015850.
  21. Bruford EA, Braschi B, Denny P, et al. Guidelines for human gene nomenc Nat Genet 2020; 52 (8): 754–8. doi: 10.1038/s41588-020-0669-3.
  22. Lanzillotta M, Mancuso G, Della-Torre Advances in the diagnosis and management of IgG4 related disease. BMJ 2020; 369: m1067. doi: 10.1136/bmj.m1067.
  23. Chen LYC, Mattman A, Seidman MA, et al. IgG4-related disease: what a hematologist needs to know. Haematologica 2019; 104 (3): 444–55. doi: 3324/haematol.2018. 205526.
  24. Mattoo H, Mahajan VS, Maehara T, et al. Clonal expansion of CD4(+) cytotoxic T lymphocytes in patients with IgG4-related J Allergy Clin Immunol 2016; 138 (3): 825–38. doi: 10.1016/j.jaci.2015.12.1330.
  25. Fajgenbaum DC, Uldrick TS, Bagg A, et al. International, evidence-based consensus diagnostic criteria for HHV8-negative/idiopathic multicentric Castleman disease. Blood 2017; 129 (12): 1646–57. doi: 11182/blood-201610-746933.
  26. Katano H, Sata T. Human herpesvirus 8 virology, epidemiology and related Jpn J Infect Dis 2000; 53 (4): 137–55. PMID: 11056556.
  27. Tałasiewicz K, Czachowska A, Śmiałek-Kania K, et al. Progressive transformation of germinal centers: an illustration of two clinical c Ann Hematol 2018; 97 (6): 1081–3. doi: 10.1007/s00277-018-3257-1.
  28. Hartmann S, Winkelmann R, Ryan A, et al. Immunoarchitectural patterns of progressive transformation of germinal centers with and without nodular lymphocyte-predominant Hodgkin Hum Pathol 2015; 46 (11): 1655–61. doi:  10.1016/j.humpath.2015.07.006.
  29. Laville D, Martin L, Chauleur C, et al. Florid lymphoid hyperplasia or lymphoma-like lesion of the lower genital tract: A 35-year literature review in view of the new WHO classifi Int J Gynecol Pathol 2022; 41 (5): 459–69. doi: 10.1097/PGP.0000000000000830.
  30. Young RH, Harris NL, Scully Lymphoma-like lesions of the lower female genital tract: A report of 16 cases. Int J Gynaec Pathol 1985; 4 (4): 289–99. doi: 10.1097/00004347198512000-00002.
  31. Moorman AV. New and emerging prognostic and predictive genetic biomarkers in B-cell precursor acute lymphoblastic Haematologica 2016; 101 (4): 407–16. doi: 10.3324/haematol.2015.141101.
  32. Kulis J, Sędek Ł, Słota Ł, et al. Commonly assessed markers in childhood BCP-ALL diagnostic panels and their association with genetic aberrations and outcome prediction. Genes (Basel) 2022; 13 (8): 137 doi: 10.3390/genes13081374.
  33. Lilljebjörn H, Henningsson R, Hyrenius-Wittsten A, et al. Identification of ETV6-RUNX1-like and DUX4-rearranged subtypes in paediatric B-cell precursor acute lymphoblastic Nat Commun 2016; 7: 11790. doi: 10.1038/ ncomms11790.
  34. Zaliova M, Kotrova M, Bresolin S, et al. A novel B-cell precursor leukemia subtype associated with the CD27/CD44 Genes Chromosomes Cancer 2017; 56 (8): 608–16. doi: 10.1002/gcc.22464.
  35. Tsagarakis NJ, Papadhimitriou SI, Pavlidis D, et al. Flow cytometric predictive scoring systems for common fusions ETV6/RUNX1, BCR/ABL1, TCF3/PBX1 and rearrangements of the KMT2A gene, proposed for the initial cytogenetic approach in cases of B-acute lymphoblastic leuke Int J Lab Hematol 2019; 41 (3): 364–72. doi: 10.1111/ ij  12983.
  36. Moorman AV, Ensor HM, Richards SM, et al. Prognostic effect of chromosomal abnormalities in childhood B-cell precursor acute lymphoblastic leukaemia: results from the UK Medical Research Council ALL97/99 randomised Lancet Oncol 2010; 11 (5): 429–38. doi: 10.1016/S14702045(10)70066-8.
  37. Mullighan CG, Su X, Zhang J, et al. Children’s Oncology Deletion of IKZF1 and prognosis in acute lymphoblastic leukemia. N Engl J Med 2009; 360 (5): 470–80. doi: 10.1056/NEJMoa0808253.
  38. Tasian SK, Loh ML, Hunger SP. Philadelphia chromosomelike acute lymphoblastic Blood 2017; 130 (19): 2064–72. doi: 10.1182/blood-2017-06-743252.
  39. Stephens PJ, Greenman CD, Fu B, et al. Massive genomic rearrangement acquired in a single catastrophic event during cancer Cell 2011; 144 (1): 27–40. doi: 10.1016/j.cell.2010.11.055.
  40. Rand V, Parker H, Russell LJ, et al. Genomic characterization implicates iAMP21 as a likely primary genetic event in childhood B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia. Blood 2011; 117 (25): 6848–55. doi: 11182/blood-201101-329961.
  41. Li Y, Schwab C, Ryan S, et al. Constitutional and somatic rearrangement of chromosome 21 in acute lymphoblastic Nature 2014; 508 (7494): 98–102. doi: 10.1038/ nature13115.
  42. Heerema NA, Carroll AJ, Devidas M, et al. Intrachromosomal amplification of chromosome 21 is associated with inferior outcomes in children with acute lymphoblastic leukemia treated in contemporary standard-risk children’s oncology group studies: a report from the children’s oncology J Clin Oncol 2013; 31 (27): 3397–402. doi: 10.1200/JCO.2013.49.1308.
  43. Zerkalenkova E, Mikhaylova E, Lebedeva S, et al. Quantification of NG2-positivity for the precise prediction of KMT2A gene rearrangements in childhood acute Genes Chromosomes Cancer 2021; 60 (2): 88–99. doi: 10.1002/ gcc.22915.
  44. El Chaer F, Keng M, Ballen KK. MLL-rearranged acute lymphoblastic Curr Hematol Malig Rep 2020; 15 (2): 83–9. doi: 10.1007/s11899-020-00582-5.
  45. Huang Y, Bourquin Targeting the oncogenic activity of TCF3-HLF in leukemia. Mol Cell Oncol 2020; 7 (3): 1709391. doi: 10.1080/23723556.2019.1709391.
  46. Yen HJ, Chen SH, Chang TY, et al. Pediatric acute lymphoblastic leukemia with t(1;19)/TCF3-PBX1 in Taiwan. Pediatr Blood Cancer 2017; 64 (10). doi: 1002/pbc.26557.
  47. Guenzel AJ, Smadbeck JB, Golden CL, et al. Clinical utility of next generation sequencing to detect IGH/IL3 rearrangements [t(5;14)(q31;q32.1)] in B-lymphoblastic leukemia/lymphoma. Ann Diagn Pathol 2021; 53: 151761. doi: 10.1016/j.anndiagpath.2021.151761.
  48. Schinnerl D, Mejstrikova E, Schumich A, et al. CD371 cell surface expression: a unique feature of DUX4-rearranged acute lymphoblastic Haematologica 2019; 104 (8): e352–5. doi: 10.3324/haematol.2018.214353.
  49. Gu Z, Churchman M, Roberts K, et al. Genomic analyses identify recurrent MEF2D fusions in acute lymphoblastic Nat Commun 2016; 7: 13331. doi: 10.1038/ ncomms13331.
  50. Hirabayashi S, Ohki K, Nakabayashi K, et al. ZNF384-related fusion genes defi e a subgroup of childhood B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia with a characteristic Haematologica 2017; 102 (1): 118–29. doi: 10.3324/haematol.2016.151035.
  51. Hormann FM, Hoogkamer AQ, Beverloo HB, et al. NUTM1 is a recurrent fusion gene partner in B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia associated with increased expression of genes on chromosome band 131-12.2. Haematologica 2019; 104 (10): e455–9. doi: 10.3324/haematol.2018.206961.
  52. Wagener R, López C, Kleinheinz K, et al. IG-MYC+ neoplasms with precursor B-cell phenotype are molecularly distinct from Burkitt Blood 2018; 132 (21): 2280–5. doi:  10.1182/blood-2018-03-842088.
  53. Gu Z, Churchman ML, Roberts KG, et al. PAX5-driven subtypes of B-progenitor acute lymphoblastic leukemia. Nat Genet 2019; 51 (2): 296–307. doi: 11038/s41588-0180315-5.

Статьи по теме:

  1. В-КЛІТИННІ НОВОУТВОРЕННЯ ЛІМФОЇДНОЇ ТКАНИНИ У П’ЯТОМУ ПЕРЕГЛЯДІ КЛАСИФІКАЦІЇ ВООЗ ГЕМАТОЛІМФОЇДНИХ ПУХЛИН (2022 р.) 2. Пухлини зі зрілих В-клітин, плазмоклітинні пухлини та парапротеінемії
  2. ФУНКЦІОНАЛЬНИЙ ОНКОГЕНОМ — ОСНОВА СУЧАСНОЇ ДІАГНОСТИКИ ТА НОВОЇ СТРАТЕГІЇ ПРОТИПУХЛИННОЇ ТЕРАПІЇ
  3. СОВРЕМЕННЫЕ ВОЗМОЖНОСТИ ДИАГНОСТИКИ И ЛЕЧЕНИЯ РАКА ЖЕЛУДКА
  4. СУПЕРЕЧЛИВІ ПИТАННЯ ДІАГНОСТИКИ ТА ХІРУРГІЧНОГО ВИДАЛЕННЯ МЕЛАНОМИ ШКІРИ
Без коментарів » Додати коментар

Publishing House “Akademperiodyka” Apteka online Компендиум — справочник лекарств №1 Chasopys online Oncology